间充质干细胞成脂分化试剂盒是自主研发的一款用于细胞脂肪诱导分化的低血清培养基，使用此培养基培养细胞，可用于骨髓、脐带、脂肪等组织来源的细胞进行诱导脂肪分化。

培养基配方：

基础培养基：500ml (P1300) ，细胞生长因子 5ml (P2002) ，脂肪细胞诱导因子 5ml (P1304)，胎牛血清：10ml（SD0200），G/A：5ml(SD0038）

诱导分化程序简单便捷。

诱导成脂细胞效率高。

诱导步骤：
一、 使用细胞细胞包被液包被细胞培养板，将传代或复苏冻存的细胞接种到6孔板上，密度为2×105 -3×105 cells/cm2或2×105 -3×105 cells/孔，只添加P2002干细胞生长因子,基础，血清和生长因子比例：    （100：5：1），置于37℃，5% CO2培养箱中培养，当细胞汇合度达到80%-90%时，用P1304脂肪诱导细胞因子重新配制培养基，基础，血清和生长因子比例：（100：1 : 1）,小心的将孔内细胞培养基吸掉，用PBS清洗两次，向6孔板中加入2mL细胞脂肪分化培养基,以此记为第0天

二、细胞诱导前可使用细胞包被液 货号：SD0044进行细胞包被，以便细胞更好的进行贴壁。

三、每隔1-2天更换新鲜的细胞脂肪分化培养基；

注意：为防止脂肪细胞脱落，建议诱导过程中出现大量脂肪细胞结节之后，换液形式变为每天一次半量换液。

四、 诱导14-21天期间，视细胞的形态变化及生长情况进行染色。

五、诱导脂肪分化结束后，吸掉6孔板中的脂肪分化培养基，用PBS冲洗1-2次。每孔加入1 mL细胞固定液，固定10~30 min；

六、 吸掉细胞固定液，PBS冲洗2次。每孔加入2 mL脂肪细胞检测染液，染色3-5 min；

七、 吸掉检测染液，用PBS冲洗2-3次；

八、将培养板置于显微镜下观察染色效果。